PROTOCOLOS   REDBIO/FAO

Micropropagación de plantas

 

Responsable  de la elaboración de este Protocolo: MSc. Ing. Agr. Ponce, María Teresa,  MSc. Ing. Agr. Guiñazú, Mónica Elizabeth Cátedra de Fisiología Vegetal. Departamento de Ciencias Biológicas. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de Cuyo. e-mail: mponce@fca.uncu.edu.ar, mguinazu@fca.uncu.edu.ar

 

Especie:  Vitis vinifera L. vid

 

Vía de regeneración:

-         Organogénesis directa

 

Establecimiento de los cultivos:

 

a)     Explante utilizado

§         Estacas herbáceas uninodales

§         Para la extracción de material vegetal para su introducción in vitro debe realizarse la extracción de campo exclusivamente desde setiembre y hasta mediados de diciembre. Fuera de esta época se recomienda extraer pámpanos y forzarlos a brotar en condiciones controladas, si las yemas ya han entrado en dormición debe realizare un tratamiento con frío (4° C) durante 20 días y posteriormente forzarlas a brotar. Durante este periodo es conveniente realizar tratamientos con Captan 2 g.L –1 y Agrimicina 1g.L-1 cada 15 días.

b)      Desinfección del explante: Las estacas deben lavarse con agua común y unas gotas de Tween 20 al menos tres veces, luego se colocan en alcohol 70 % durante 3 minutos y finalmente se deben colocar en solución de lavandina comercial al 15 % (55,5 g.L-1 de cloro activo) por 20 minutos. Se deben enjuagar con agua estéril tres veces en condiciones de asepsia.

c)      Medio de cultivo para el establecimiento : Para esta etapa se utiliza medio de Murashige Skoog (1962) con macro y micronutrientes a diluidos a la mitad, excepto el hierro que va entero, adicionado de 20 g.L-1 de sacarosa, 7 g.L-1 de agar agar. pH 6.

 Macronutrientes Murashige-Skoog (1962) diluidos a la mitad:

 

NO3 NH4                    825 mg.L-1

NO3K                         950 mg.L-1

SO4 Mg.7H2O           185 mg.L-1

PO4 H2K                    85 mg.L-1

Cl2 Ca.2H2O              220 mg.L-1

 

EDTA Na2                 18,6 mg.L-1

SO4Fe.7H2O             13,9 mg.L-1

 

Micronutrientes Murashige-Skoog (1962):

BO3H3                        3,1 mg.L-1

SO4Mn. 4H20            11,1 mg.L-1

SO4Zn. 4H20             4,3 mg.L-1

MoO4Na2.2H20         0,125 mg.L-1

SO4Cu. 5H20            0,0125 mg.L-1

Cl2Co. 6H20              0,0125 mg.L-1

IK                                0,41 mg.L-1

 

Vitaminas Murashige-Skoog (1962)

myo-inositol               100 mg.L-1

tiamina-ClH               0,1 mg.L-1

piridoxina-ClH           0,5 mg.L-1

Ac. Nicotínico            0,5 mg.L-1

Glicina                       2,0 mg.L-1

 

d)     Medio básico, hormonas, duración del establecimiento: 1 mg.L-1 de BAP (Bencilaminopurina). Duración de esta etapa 20 a 25 días.

e)     Condiciones de incubación: temperatura de 24° ± 1, fotoperiodo de 16 horas de luz  fluorescente e intensidad luminosa de 50 μmol.m-2.s-1 .

 

Subcultivo:

a)     Explante: Estacas uninodales

Medio de cultivo: En esta etapa se ha encontrado una fuerte influencia del cultivar, es por esta razón que podemos distinguir dos grupos. Grupo 1 compuesto por variedades Europeas Cabernet, Chardonnay y Malbec. Grupo 2, compuesto por variedades “criollas”  Criolla Grande, Criolla Chica, Pedro Giménez, Torrontés Riojano y Cereza. Para el Grupo 1 se utiliza medio Galzy (1964) modificado

Macronutrientes Galzy (1964) modificado:

(NO3 )Ca.4H2O         500 mg.L-1

NO3K                         125 mg.L-1

SO4 Mg.7H2O           125 mg.L-1

PO4 H2K                    125 mg.L-1

NO3NH4                     320 mg.L-1

 

EDTA Na2                 37,3 mg.L-1

SO4Fe.7H2O             27,8 mg.L-1

 

Micronutrientes Galzy (1964):

BO3H3                        0,025 mg.L-1

SO4Mn. 4H20            0,61 mg.L-1

SO4Zn. 4H20             0,05 mg.L-1

MoO4Na2.2H20         0,025 mg.L-1

SO4Cu. 5H20            0,025 mg.L-1

Cl2Co. 6H20              0,025 mg.L-1

Cl2Ni 6H20                 0,025 mg.L-1

IK                                0,25 mg.L-1

 

Vitaminas Galzy (1964) diluidas 10 veces :

myo-inositol               1 mg.L-1

tiamina-ClH               0,1 mg.L-1

piridoxina-ClH           0,1 mg.L-1

Ac. Nicotínico            0,1 mg.L-1

Pantotenato de Ca   0,1 mg.L-1

 

Adicionado con 0,01 mg. L-1 de biotina y ácido naftalén acético 0,005 mg. L-1) adicionado de 30 g.L-1 de sacarosa, 7 g.L-1 agar agar y pH 6. Para el Grupo 2 se debe utilizar medio Murashige Skoog (1962) con macro y micronutrientes diluidos a la mitad según se detalla en el punto c, adicionado de 30 g. L-1 de sacarosa y solidificados con 7,5 g. L-1  de agar agar y pH 5,9 sin hormonas.

c)b)                      Condiciones de incubación: temperatura de 24° ± 1, fotoperiodo de 16 horas de luz  fluorescente e intensidad luminosa de 100 μmol.m-2.s-1 .

 

Enraizamiento: Bajo las condiciones arriba descriptas el enraizamiento se logra en la etapa de multiplicación.

a)     Medio de cultivo:

b)     condiciones de incubación

 

Aclimatación:

Esta es una etapa crítica para esta especie. Se puede utilizar como substrato perlita o una mezcla de orujo agotado de uva y arena (7:3), previamente esterilizado.  Una vez extraídas las plantas de los frascos se deben lavar varias veces con agua común y luego sumergir en solución de Captan y Benlate (1g.L-1 de cada producto). Posteriormente se colocan en recipientes individuales (vasos plásticos o macetas ). Las plantas así dispuestas se colocan en cámara húmeda bajo condiciones controladas de luz y temperatura (21° C ± 2, fotoperiodo de 16 horas de luz  fluorescente e intensidad luminosa de 100 μmol.m-2.s-1 ). Es importante comenzar la disminución de la humedad relativa sólo cuando las plantas retoman el crecimiento y esto debería ocurrir en un periodo no superior a 20 días, pasado este plazo sin retomar el crecimiento las plantas se vuelve muy propensas a pudriciones a nivel de cuello. El tiempo total de aclimatación es de 30 a 40 días. Luego de este periodo pueden pasar a media sombra por 7 a 10 días y luego pueden pasar a pleno sol.

 

Rendimiento de este protocolo: datos de eficiencia,

Para el grupo 1 la tasa de multiplicación es de 5 cada 45 días. Mientras que para el grupo 2 es de 7 cada 45 días.

 

Observaciones:

 

Bibliografía:

Cavagnaro, B.; Ponce, M.T.; Guzmán, J. and Cirrinciones M.A. 2005 In vitro evaluation of salt tolerance in argentinean and european cultivars of Vitis vinifera L. Biocell (en prensa)

Mónica E. Guiñazú; María T. Ponce; Javier Guzmán; Daniel E. Juarez y Miguel A. Cirrincione 2005 MICROPROPAGACIÓN DE VID Protocolo para variedades “criollas”. Revista de la facultad de Ciencias Agrarias. En prensa.

 

Pagina web del laboratorio o del autor

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