PROTOCOLOS   REDBIO/FAO           

Micropropagación de plantas

 

Responsable  de la elaboración de este Protocolo: Vilma Cecilia Conci, INTA-IFFIVE, Camino 60 cuadras km 5,5 (5119) Córdoba, Argentina. TE: 0351-4973636

FAX: 0351-4974330 e-mail: vconci@correo.inta.gov.ar

 

Especie:  Allium sativum (ajo)

Vía de regeneración: Especificar: Organogénesis directa

 

Establecimiento de los cultivos:

 

a)     Explante utilizado

§         Especificar: meristema (constituido por el domo más 1 primordio foliar (0,3 mm aproximadamente). Hacer la extracción a partir de bulbillo (diente) despierto.

b)      Desinfección del explante: para la extracción del meristema se corta un trozo de tejido en forma cúbica, incluyendo el disco basal donde está el meristema. Este se desinfecta mediante una inmersión en alcohol 70% y luego con hipoclorito de Na al 5 % durante 10-15 min. Posteriormente el trozo de tejido es colocado sobre papel estéril bajo una lupa estereoscópica dentro de una cámara de flujo laminar y con la ayuda de instrumental estéril se procede a la extracción del explanto. Luego de la escisión el explanto debe ser rápidamente sembrado en medio de iniciación donde se desarrollará una planta completa.

c)      Medio de cultivo para el establecimiento :

 

Soluciones madre (Murashige and Skoog, 1964)

 

Compuestos Orgánicos

 

Thiamina..................................0,4 mg/l

Inositol.....................................100 mg/l

Acido Nicotínico.......................0,5 mg/l

Piridoxina..................................0,5 mg/l

Glicina...........................................2 mg/l

Sulfato de Adenina...................80 mg/l

Agar............................................6-7 mg/l

 

pH: 5,7

 

Medio de Iniciación (meristema)

Soluciones Madre y compuestos orgánicos

Sucrosa: 30 g/l

Hormonas: AIA......................0,1 mg/l

                  Cinetina................0,1 mg/l

 

 

e)     condiciones de incubación: 21 C

 

Subcultivo:

a)     Explante: plántula

b)     Medio de cultivo

Medio de Multiplicación

Soluciones Madre y compuestos orgánicos

Sucrosa: 30 g/l

Hormonas: 2ip.........................3 mg/l

                  ANA.....................0,30 mg/l

 

c)     Condiciones de incubación: 23-25 C

 

Enraizamiento:

a)     Medio de cultivo: en el mismo medio de cultivo.

b)     condiciones de incubación: 23-25 C

 

Rusticación y transplante ex vitro

Después de varios ciclos in vitro, muchas plantas bulbifican espontáneamente y otras deben ser inducidas. Repicando los plantines a un medio sin hormonas, con alto contenido de sacarosa y luz continua se consigue mejorar el porcentaje de bulbificación  en algunos clones, o bien, se obtienen plantas más robustas que soportan el transplante a suelo sin dificultad.

 

Aclimatación:

 

Los minibulbillos obtenidos in vitro son cosechados y sembrados en suelo estéril compuesto por una mezcla de tierra/mantillo/arena (1/1/1). Las plantas que no forman bulbos son transferidas a suelo y mantenidas en cámara húmeda por un tiempo variable entre 15 y 20 días, luego son paulatinamente adaptadas a las condiciones naturales de humedad y temperatura.

 

Rendimiento de este protocolo: datos de eficiencia,

Tasa de multiplicación variable según cultivar alrededor 1/6 cada 8 semanas.

 

Observaciones:

 

Bibliografía:

 

Conci V. C.; Cafrune E. E.; Lunello P.; Nome S. y Perotto C. 2004. Producción de planas de ajo libres de virus. En Echenique, V., Rubinstein, C. y Mroginski, L. (Eds.). Biotecnología y Mejoramiento Vegetal. Parte VIII, Cap. 6: 313-316. Ediciones INTA, Buenos Aires, Argentina. ISBN 987-521-138-9.

CONCI, V. C. 2004. Obtención de plantas libres de virus. En Echenique, V., Rubinstein, C. y Mroginski, L. (Eds.). Biotecnología y Mejoramiento Vegetal. Parte VIII, Cap. 5: 303-312. Ediciones INTA, Buenos Aires, Argentina. ISBN 987-521-138-9.

CONCI, V.C. 1997. Virus y Fitoplasmas de ajo. In BURBA, J. L. 50 temas sobre producción de ajo. Vol. 3: 267-293. EEA-INTA La Consulta, Mendoza, Argentina.

CONCI, V.C. y S.F. Nome. 1991. Virus free garlic (Allium sativum L) plants obtained by thermotherapy and meristem tip culture. J. Phytopathology 132: 189-192.

MORICONI,D.N.; V.C.CONCI and S.F.NOME. 1990. Rapid Multiplication of garlic (Allium sativum L.) in vitro. Phyton-International Journal of Experimental Botany 51 (2): 145-151. ISSN: 0031-9457.

PEROTTO, M. C.; CONCI; V. C.; CAFRUNE, E. E.; ALOCHIS; P. and BRACAMONTE, R. 2003. Differences in the Response of Garlic Cultivars to the Eradication of Five Viruses. Phyton-International Journal of Experimental Botany: 233-240.

 

 

Pagina web del laboratorio o del autor

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