Responsable de la elaboración de este Protocolo:
MSc
Ing. Agr. María Teresa Ponce. Cátedra de Fisiología Vegetal. Departamento de
Ciencias Biológicas. Facultad de Ciencias Agrarias. Universidad Nacional de
Cuyo. e-mail: mponce@fca.uncu.edu.ar

Especie: Glandularia
perakii Cov. Et Schn.
Especie
nativa ornamental.
Vía de
regeneración:
Organogénesis
directa
Establecimiento
de los cultivos:
a) Explante utilizado
§
Estacas uninodales de 1 a 2 cm de largo.
§
Las plantas madres deben permanecer en invernáculo o cámaras
de crecimiento por 20 días previo a la extracción de las estacas. Este
procedimiento favorece el alargamiento de tallos y disminuye la lignificación,
además de disminuir notablemente las infecciones in vitro.
b) Desinfección
del explante: Las estacas uninodales se deben lavar con agua común y
posteriormente colocar en alcohol 70 % por un minuto y luego 10 minutos en
lavandina comercial al 15 % (55,5 g.L-1 de cloro activo), se deben
enjuagar con agua estéril tres veces en condiciones de acepsia.
c) Medio de cultivo para el establecimiento :
Macronutrientes
Murashige-Skoog (1962):
NO3 NH4 1650
mg.L-1
NO3K 1900
mg.L-1
SO4 Mg.7H2O 370
mg.L-1
PO4 H2K 170
mg.L-1
Cl2 Ca.2H2O 440
mg.L-1
EDTA Na2 37,3 mg.L-1
SO4Fe.7H2O 27,8
mg.L-1
Micronutrientes Murashige-Skoog (1962):
BO3H3 6,2
mg.L-1
SO4Mn. 4H20 22,3
mg.L-1
SO4Zn. 4H20
8,6 mg.L-1
MoO4Na2.2H20 0,25 mg.L-1
SO4Cu. 5H20 0,025
mg.L-1
Cl2Co. 6H20 0,025
mg.L-1
IK 0,83
mg.L-1
Vitaminas Murashige-Skoog (1962)
myo-inositol 100 mg.L-1
tiamina-ClH 0,1 mg.L-1
piridoxina-ClH 0,5 mg.L-1
Ac. Nicotínico 0,5 mg.L-1
Glicina 2,0
mg.L-1
Adicionado de
20 g.L-1 de sacarosa y 8
g.L-1 de agar agar. pH 6, ajustado antes del autoclavado 20 minutos
a 121° C.
a) Explante: estacas uninodales.
b) Medio de cultivo: Murashige Skoog (1962), 20 g.L-1
sacarosa, 8 g.L-1 de agar agar pH 6.
c)
Condiciones de
incubación:
temperatura de 24° ± 1, fotoperiodo de 16 horas de luz fluorescente e intensidad luminosa de 100
μmol.m-2.s-1 .
Enraizamiento:
a) Medio de cultivo:
b)
condiciones de
incubación
Aclimatación:
La aclimatación debe realizarse en
cámaras de vidrio o plásticas. Se pueden utilizar distintos substrato tales
como perlita, orujo agotado y arena 8:2 o humus y arena 7:3. A temperaturas de 20 a 25 ° C y con 100 % de humedad retoman el crecimiento
en 7 a 10 días, posteriormente se puede comenzar a abrir las cámaras
paulatinamente, el tiempo necesario para la aclimatación ex vitro es de 20 a 25
días.
Rendimiento de
este protocolo: datos de eficiencia,
La
tasa de multiplicación es de 7,9 cada 20 días.
Observaciones:
Bibliografía:
Marino, C.; Ponce, M.T., Videla M.E.,
Fioretti, S. and Cirrincione, M.A. 2003. Micropropagation of Glandularia perakii Cov, et Schn.
(Verbenaceae), native species with ornamental potencial. Biocell 27(1): 57-60.